Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico

Los parámetros de calidad microbiológica para bioplaguicidas producidos a base de hongos, bacterias y virus son similares, pues se enfocan, principalmente, en la identificación, cuantificación y viabilidad del principio activo y en la determinación del contenido de contaminantes. Sin embargo, existe...

Descripción completa

Detalles Bibliográficos
Autor principal: Santos Díaz, Adriana Marcela
Formato: book part
Lenguaje:Español
Publicado: Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA 2022
Materias:
Acceso en línea:http://hdl.handle.net/20.500.12324/37091
https://repository.agrosavia.co
id RepoAGROSAVIA37091
record_format dspace
institution Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria
collection Repositorio AGROSAVIA
language Español
topic Protección de plantas aspectos generales - H01
Plagas de las plantas - H10
Control de calidad
Agentes de control biológico
Microorganismos
Transversal
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_6401
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_920
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_4807
spellingShingle Protección de plantas aspectos generales - H01
Plagas de las plantas - H10
Control de calidad
Agentes de control biológico
Microorganismos
Transversal
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_6401
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_920
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_4807
Santos Díaz, Adriana Marcela
Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
description Los parámetros de calidad microbiológica para bioplaguicidas producidos a base de hongos, bacterias y virus son similares, pues se enfocan, principalmente, en la identificación, cuantificación y viabilidad del principio activo y en la determinación del contenido de contaminantes. Sin embargo, existen aspectos particulares que requieren más atención que otros, los cuales dependen del sistema de producción o fermentación, de las características propias del principio activo y del tipo de formulación a utilizar (Burges, 1998; Ibrahim et al., 2015)
format book part
author Santos Díaz, Adriana Marcela
author_facet Santos Díaz, Adriana Marcela
author_sort Santos Díaz, Adriana Marcela
title Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
title_short Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
title_full Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
title_fullStr Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
title_full_unstemmed Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
title_sort control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico
publisher Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA
publishDate 2022
url http://hdl.handle.net/20.500.12324/37091
https://repository.agrosavia.co
work_keys_str_mv AT santosdiazadrianamarcela controldecalidadmicrobiologicodebioplaguicidasabasedeagentesdecontrolbiologico
_version_ 1808107011575906304
spelling RepoAGROSAVIA370912023-06-30T16:08:47Z Control de calidad microbiológico de bioplaguicidas a base de agentes de control biológico Santos Díaz, Adriana Marcela Protección de plantas aspectos generales - H01 Plagas de las plantas - H10 Control de calidad Agentes de control biológico Microorganismos Transversal http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_6401 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_920 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_4807 Los parámetros de calidad microbiológica para bioplaguicidas producidos a base de hongos, bacterias y virus son similares, pues se enfocan, principalmente, en la identificación, cuantificación y viabilidad del principio activo y en la determinación del contenido de contaminantes. Sin embargo, existen aspectos particulares que requieren más atención que otros, los cuales dependen del sistema de producción o fermentación, de las características propias del principio activo y del tipo de formulación a utilizar (Burges, 1998; Ibrahim et al., 2015) ‎‎Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA 2022-04-25T16:52:17Z 2022-04-25T16:52:17Z 2022 2022 book part Capítulo http://purl.org/coar/resource_type/c_3248 info:eu-repo/semantics/bookPart https://purl.org/redcol/resource_type/CAP_LIB http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 http://hdl.handle.net/20.500.12324/37091 10.21930/agrosavia.manual.7405125.Cap4 Biblioteca Digital Agropecuaria de Colombia https://repository.agrosavia.co Corporación colombiana de investigación agropecuaria AGROSAVIA spa 29 66 Alves, S. B, Pereira, R. M., & Stimac, J. L. (1996). Delayed germination of Beauve ria bassiana conidia after prolonged storage at low, above-freezing tem peratures. Biocontrol Science and Technology, 6(1), 575-582. https://doi. org/10.1080/09583159631217 Alves, S. B, Rossi, L. S, Lopes, R. B., Tamai, M. A, & Pereira, R. M. (2002). Beauve ria bassiana yeast phase on agar medium and its pathogenicity against Dia traea saccharalis (Lepidoptera: Crambidae) and Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). Journal of Invertebrate Pathology, 81(2), 70-77. https://doi. org/10.1016/S0022-2011(02)00147-7 Barrera, G. P., Murcia, J., Cerón, J. L., Cuartas, P. E., Guzmán, C. A., & Villamizar, L. F. (2016). PCR en tiempo real: una metodología útil para la detección y cuantificación de granulovirus. Revista Colombiana de Biotecnología, 18(2), 24-31. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n2.61514 Bioscience. (2018). Identifying and resolving the sources of hemacytometer counting error through automation. Bioscience. Bou, G., Fernández-Olmos, A., García, C., Sáez-Nieto, J. A., & Valdezate, S. (2011). Métodos de identificación bacteriana en el laboratorio de microbiología. Enfermedades Infecciosas y Microbiologia Clínica, 29(8), 601-608. https:// doi:10.1016/j.eimc.2011.03.012 Burges, H. D. (1998). Formulation of microbial biopesticides. Kluwer Academic Pub lishers Caballero, P., Williams, T., & López-Ferber, M. (2001). Los baculovirus y sus aplica ciones como bioinsecticidas en el control biológico de Caligiore-Gei, P. F., & Valdez, J. G. (2015). Ajuste de un método rápido para la cuantificación de suspensiones de esporas de Fusarium spp. en fitopatolo gía. Revista Argentina de Microbiología, 47, 152-154. https://doi:10.1016/j. ram.2015.03.002 Corral-Lugo, A., Morales-García, Y., Pazos-Rojas, L., Ramírez-Valverde, A., Mar tínez-Contreras, R., & Muñoz-Rojas, J. (2012). Cuantificación de bacterias cultivables mediante el método de “Goteo en Placa por Sellado (o estampado) Masivo. Revista Colombiana de Biotecnología, 14(2), 147-156 Cotes, A. M., Fargetton, X. & Köhl, J. (2018). Diseño conceptual, selección y prueba de concepto de microorganismos biocontroladores. En A. Cotes. (Ed.), Con trol biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros: aplicaciones y perspectivas (pp. 594-628). agrosavia. Díaz, A., Gómez, M., Grijalba, E., Santos, A., Cruz, F., León, D., Alarcón, E., & Cotes, A. (2018). Desarrollo y escalamiento de bioplaguicidas. En A. Cotes. (Ed.), Control biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros: aplicaciones y perspecti vas (pp. 628-692). agrosavia. Eberle, K. E., Wennmann, J. T., Kleespies, R. G., & Jehle J. A. (2012). Basic techniques in insect virology. En L. A. Lacey (Ed.), Manual of Techniques in Invertebrate Pathology (pp. 15-74). Elsevier. Faria, M., Hotchkiss, J. H., Hajek, A. E., & Wraight S. P. (2010). Debilitation in co nidia of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae and implication with respect to viability determinations and my copesticide quality assessments. Journal of Invertebrate Pathology, 105(1), 74- 83. https://doi:10.1016/j.jip.2010.05.011 Faria, M., Lopes, R. B., Souza, D. A., & Wraight, S. P. (2015). Conidial vigor vs. viabi lity as predictors of virulence of entomopathogenic fungi. Journal of Inverte brate Pathology 125(1), 68-72. https://doi:10.1016/j.jip.2014.12.012 Feng, K. C., Liu, B. L., & Tzeng, Y. M. (2002). Morphological characterization and germination of aerial and submerged spores of the entomopathogenic fun gus Verticillium lecanii. World Journal Microbioloogy and Biotechnology, 18(1), 217-224. https://doi.org/10.1023/A:1014933229314 Fernandes, E. K., Rangel, D. E. N., Moraes, A. M. L., Bittencourt, V., & Roberts, D. W. (2007). Variability in tolerance to UV-B radiation among Beauveria spp. isolates. Journal of Invertebrate Pathology, 96(1), 237-243. Glare, T., & Moran, M. (2016). Microbial-based Biopesticides: Methods and Protocols. Humana Press. Gorsuch, J. P. & Woodruff, P. (2019). Nutrient germination improves DNA recovery from industrial Bacillus subtilis endospores during qPCR enumeration as says. Heliyon, 5(12), e02917. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e0 Graham, R. I., Tummala, Y., Rhodes, G., Cory, J. S., Shirras, A., Grzywacz, D., & Wilson, K. (2015). Development of a real-time qPCR assay for quantification of covert baculovirus infections in a major african crop pest. Insects, 6(3), 746-759. https://doi.org/10.3390/insects6030746 Grijalba, E. P., Espinel, C., Cuartas, P. E., Chaparro, M. L., & Villamizar, L. F. (2018). Metarhizium rileyi biopesticide to control Spodoptera frugiperda: Stabil ity and insecticidal activity under glasshouse conditions. Fungal Biology, 122(11), 1069-1076. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2018.08.010 Hernández, D., & Acebo, A. (2013). Los métodos turbidimétricos y sus aplicaciones en las ciencias de la vida. Revista Cenic Ciencias Biológicas, 44(1), 1-18 Hjeljord, L. (2000). Effect of temperature and nutrient stress on the capacity of com mercial Trichoderma products to control Botrytis cinerea and Mucor piri formis in greenhouse strawberries. Biological Control, 19(2), 149-160. https:// doi.org/10.1006/bcon.2000.0859 Horaczek, A., & Viernstein, H. (2004). Comparison of three commonly used dry ing technologies with respect to activity and longevity of aerial conidia of Beauveria brongniartii and Metarhizium anisopliae. Biological Control 31(1), 65-71. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2004.04.016 Ibrahim, L., Laham, L., Touma, A., & Ibrahim, S. (2015). Mass production, yield, quality, formulation and efficacy of entomopathogenic Metarhizium aniso pliae conidia. British Journal of Applied Science & Technology, 9(5), 427-440. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.4339.2484 Inglis, G., Enkerli, J., & Goettel, M. S. (2012). Laboratory techniques used for en tomopathogenic fungi. Hypocreales. En L. A. Lacey (Ed.), Manual of Tech niques in Invertebrate Pathology (pp. 189-253). El Jackson, A., Whipps, J. M., Lynch, J. M., & Bazin, M. (1991). Effects of some carbon and nitrogen sources on spore germination, production of biomass and an tifungal metabolites by species of Trichoderma and Gliocladium virens an tagonistic to Sclerotium cepivorum. Biocontrol Sciece and Technology, 1(1), 43-51. https://doi.org/10.1080/09583159109355184 Jenkins, N., & Grzywacz, D. (2000). Quality control of fungal and viral biocontrol agents assurance of products performance. Biocontrol Science and Technolo gy, 10(6), 753-777. https://doi.org/10.1080/09583150020011717 Jenkins, N., & Grzywacz, D. (2003). Quality control and production of biological control agents: theory and testing procedures. En J. C. van Lenteren (Ed.), Quality control and production of biological control agents: Theory and Tes ting Procedures. cabi Publishing. Kim, J. C., Lee, M. R., Kim, S., Lee, S. J., Park, S. E., Baek, S., Gasmi, L., Shin, T. Y., & Kim, J. S. (2019). Long-term storage stability of Beauveria bassiana ERL836 granules as fungal biopesticide. Journal of Asia-Pacific Entomology, 22(2), 537-542. https://doi.org/10.1016/j.aspen.2019.04.001 Kobori, N. N., Mascarin, G. M., Jackson, M. A., Schisler, D. A., & Money, N. (2014). Liquid culture production of microsclerotia and submerged conidia by Tri choderma harzianum active against damping-off disease caused by Rhizoc tonia solani. Fungal Biology, 119(4), 179-190. https://doi.org/10.1016/j.fun bio.2014.12.005 Lacey, A. L. (2017). Microbial control of insect and mite pests. Elsevier Lazzarini, G., Rocha, L., & Luz, C. (2006). Impact of moisture on in vitro germi nation of Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana and their activity on Triatoma infestans. Mycological Research, 110(4), 485-492. https://doi.or g/10.1016/j.mycres.2005.12.001 Lopes, R. B., Martins, I., Souza, D. A., & Faria, M. (2013). Influence of some parame ters on the germination assessment of mycopesticides. Journal of Invertebra te Pathology 112(3), 236-242. https://doi.org/10.1016/j.jip.2012.12.01 Magoye, E., Pfister, M., Hilber-Bodmer, M., & Freimoser, F. M. (2020). Competition assays to quantify the effect of biocontrol yeasts against plant pathogenic fungi on Fruits. Bio-Protocol, 10(3), e3518. https://doi.org/10.21769/BioPro toc.3518 Meikle, W. G., Mercadier, G., Guermache, F., & Bon, M. C. (2012). Pseudomonas contamination of a fungus-based biopesticide: Implications for honey bee (Hymenoptera: Apidae) health and Varroa mite (Acari: Varroidae) control. Biol Control, 60(3), 312-320. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2011.12.004 Miele, S. A., Belaich, M. N., Garavaglia, M. J., & Ghiringhelli, P. (2011). Quality con trol of baculoviral bioinsecticide production. En I. Akyar (Ed), Wide spectra of quality control (pp. 411-428). IntechOpen Milner, R. J., Huppatz, R. J., Swaris, S. C. (1991). A new method for assessment of ger mination of Metarhizium conidia. Journal of Invertebrate Pathology, 57(1), 121-123. Miranda-Hernández, F., Angel-Cuapio, A., & Loera-Corral, O. (2016). Production of fungal spores for biological control. En A. Pandey, S. Negi & C. R. Soccol (Eds.), Current Developments in Biotechnology and Bioengineering: Produc tion, Isolation and Purification of Industrial Products (pp. 757-779). Elsevier Morales-García, Y. E., Hernández-Canseco, J., Ramos-Castillo, G., Pérez-Terrón, R., & Muñoz-Rojas, J. (2016). Cuantificación de Penicillium sp. Por el método de goteo en placa. Revista Iberoamericana de Ciencias, 3(1), 12-19 Muñoz-Rojas, J., Morales-García, Y. E., Baez-Rogelio, A., Quintero-Hernández, V., Rivera-Urbalejoa, A. P. & Pérez-Terrrón, R. (2016). Métodos económicos para la cuantificación de microorganismos. En G. Chavira (Ed.), Institucio nes de educación superior la labor investigadora e innovadora en México (pp. 67-84). Science Associated Editors. Oliveira, D., Pauli, G., Mascarin, G. M., & Delalibera, I. (2015). A protocol for de termination of conidial viability of the fungal entomopathogens Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae from commercial products. Jour nal of Microbiological Methods, 119(1), 44-52. https://doi.org/10.1016/j.mi met.2015.09.021 Petlamul, W., & Prasertsan, P. (2012). Evaluation of strains of Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana against Spodoptera litura on the basis of their viru lence, germination rate, conidia production, radial growth and enzyme activ ity. Mycobiology, 40(2),111-116. https://doi.org/10.5941/MYCO.2012.40.2.111 Rangel, D., Braga, G., Anderson, A. J., & Roberts, D. W. (2005). Influence of growth environment on tolerance to uv-b radiation, germination speed, and mor phology of Metarhizium anisopliae var. acridum conidia. Journal of Inverte brate Pathology. 90(1), 55-58. https://doi.org/10.1016/j.jip Ravensberg, W. (2011). Quality control. En J. Grould, K. Hoelmer, & J. Goolshy (Eds.), A roadmap to the successful development and commercialization of microbial pest control products for control products for control of arthropods (pp. 129-197). Springer Rivas, F., Núñez, P., Jackson, T., & Altier, N. (2014). Effect of temperature and water activity on mycelia radial growth, conidial production and germination of Lecanicillium spp. isolates and their virulence against Trialeurodes vaporar iorum on tomato plants. BioControl, 59(1), 99-109, https://doi.org/10.1007/ s10526-013-9542-y Sanogo, S., Pomella, A., Hebbar, P. K., Bailey, B., Costa, J. C. B., Samuels, G. J., & Lumsden, R. D. (2002). Production and germination of conidia of Trichoder ma stromaticum, a mycoparasite of Crinipellis perniciosa on cacao. Phytopa thology, 92(10), 1032-1037. https://doi.org/10.1094/PHYTO.20 Santos, A., Brandão, P., & Villamizar, L. (2017). Efecto de estrés térmico y de irra diación con luz ultravioleta (UV-B) sobre características de Nomuraea ri leyi Nm006. Revista Colombiana de Biotecnología, 19(1), 81-91. https://doi. org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n1.55943 Santos, A., García, M., Cotes, A. M., Villamizar, L. (2012). Efecto de la formulación sobre la vida útil de bioplaguicidas a base de dos aislamientos colombianos de Triichoderma koningiopsis Th003 y Trichoderma asperellum Th034. Revis ta Iberoamericana de Micología, 29(3),150-156. Santos, A., Grijalba, E., Zuluaga, M., Gómez, M., & Villamizar, L. (2013). Compatibi lidad in vitro de un bioplaguicida a base de Lecanicillium lecanii (Hypocrea les: Clavicipitaceae) con agroquímicos empleados en los cultivos de algodón y berenjena. Revista Colombiana de Biotecnología, 15(2), 132-142. https://doi. org/10.15446/rev.colomb.biote.v15n2.38025 Schütz, G., Haltrich, D., & Atanasova, L. (2020). Influence of spore morphology on spectrophotometric quantification of Trichoderma inocula. Biotechnique, 68(5), 2-5. https://doi.org/10.2144/btn-2019-0152 37049 ; Plaguicidas microbianos: control y aseguramiento de calidad Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/ application/pdf application/pdf C.I Tibaitatá Colombia Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA Mosquera