Vigilancia científica sobre desarrollo de vacunas contra Leptospira spp.

Vigilancia científica sobre desarrollo de vacunas contra Leptospira spp.

La leptospirosis sigue siendo una zoonosis de gran relevancia sanitaria y económica, motivando avances en estrategias diagnósticas y vacunales. Este estudio analizó 2.773 publicaciones científicas sobre vacunas y diagnósticos para Leptospira spp., extraídas de Scopus® mediante una búsqueda estructur...

Descripción completa

Detalles Bibliográficos
Autores principales: Cárdenas Solano, Leidy Johanna, Contreras Pedraza, Carlos Alberto
Formato: Estudio de vigilancia
Lenguaje:Español
Publicado: Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA 2025
Materias:
Enfermedades de los animales - L73
Leptospira
Enfermedades de los animales
Bacteria
Fiebre amarilla
Ganadería y especies menores
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_4280
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_426
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_765
http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_24293
Acceso en línea:http://hdl.handle.net/20.500.12324/41042
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Cárdenas Solano, Leidy Johanna
Contreras Pedraza, Carlos Alberto
Vigilancia científica sobre desarrollo de vacunas contra Leptospira spp.
description La leptospirosis sigue siendo una zoonosis de gran relevancia sanitaria y económica, motivando avances en estrategias diagnósticas y vacunales. Este estudio analizó 2.773 publicaciones científicas sobre vacunas y diagnósticos para Leptospira spp., extraídas de Scopus® mediante una búsqueda estructurada. Con apoyo de Bibliometrix® y VOSviewer®, se identificaron tendencias que destacan el paso de vacunas tradicionales hacia plataformas basadas en proteínas recombinantes, antígenos multiepitópicos y vacunología inversa, así como el desarrollo de pruebas diagnósticas innovadoras utilizando péptidos serorreactivos, OMVs y biomarcadores urinarios. A pesar de los avances, persisten retos metodológicos en estandarización de modelos, dosis de desafío y validación en campo. Estos hallazgos aportan insumos relevantes para orientar agendas de investigación, innovación biotecnológica y políticas de salud pública frente a la leptospirosis. Adicionalmente, se efectuó un análisis cualitativo detallado sobre un subconjunto de 226 artículos seleccionados del corpus total por el equipo de vacunas de AGROSAVIA, considerando resúmenes, introducciones y conclusiones, con el fin de caracterizar la evolución temática y las tendencias más recientes en el diseño de vacunas recombinantes.
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Con apoyo de Bibliometrix® y VOSviewer®, se identificaron tendencias que destacan el paso de vacunas tradicionales hacia plataformas basadas en proteínas recombinantes, antígenos multiepitópicos y vacunología inversa, así como el desarrollo de pruebas diagnósticas innovadoras utilizando péptidos serorreactivos, OMVs y biomarcadores urinarios. A pesar de los avances, persisten retos metodológicos en estandarización de modelos, dosis de desafío y validación en campo. Estos hallazgos aportan insumos relevantes para orientar agendas de investigación, innovación biotecnológica y políticas de salud pública frente a la leptospirosis. Adicionalmente, se efectuó un análisis cualitativo detallado sobre un subconjunto de 226 artículos seleccionados del corpus total por el equipo de vacunas de AGROSAVIA, considerando resúmenes, introducciones y conclusiones, con el fin de caracterizar la evolución temática y las tendencias más recientes en el diseño de vacunas recombinantes. Ganadería bovina 2025-07-07T19:35:29Z 2025-07-07T19:35:29Z 2025-06 2025 Estudio de vigilancia http://hdl.handle.net/20.500.12324/41042 10.21930/agrosavia.vigilanciacientifica.2025.4 spa Perspectivas científicas del agro Aria, M., Cuccurullo, C., D’aniello, L., Misuraca, M., & Spano, M. (2022). Thematic Analysis as a New Culturomic Tool: The Social Media Coverage on COVID-19 Pandemic in Italy. Sustainability (Switzerland), 14(6). https://doi.org/10.3390/su14063643 Baldwin, C. L., Hsu, H., Chen, C., Palmer, M., McGill, J., Waters, W. R., & Telfer, J. C. (2014). The role of bovine γδ T cells and their WC1 co-receptor in response to bacterial pathogens and promoting vaccine efficacy: A model for cattle and humans. Veterinary Immunology and Immunopathology, 159(3–4), 144–155. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2014.02.011 Barbosa, A. S., & Isaac, L. (2020). Strategies used by Leptospira spirochetes to evade the host complement system. FEBS Letters, 594(16), 2633–2644. https://doi.org/10.1002/1873-3468.13768 Barreto, L. V., Barreto, G. E., Morales, L., Acevedo, O. E., & González Santos, J. (2012). Proteína LIC10494 de Leptospira interrogans serovar Copenhageni: modelo estructural y regiones funcionales asociadas. Universitas Scientiarum, 17(1), 16. https://doi.org/10.11144/javeriana.SC17-1.plol Bey, R. F., Auran, N. E., & Johnson, R. C. (1974). Immunogenicity of Whole Cell and Outer Envelope Leptospiral Vaccines in Hamsters. Infection and Immunity, 10(5), 1051–1056. https://doi.org/10.1128/iai.10.5.1051-1056.1974 Bodisko, V. P. (1946). Liberation of leptospira strains from spontaneous agglutination. [Osvobozhdenie shtammov leptospir ot spontannoi aggliutinacii]. Zhurnal Mikrobiologii, Epidemiologii, i Immunobiologii [Osvobozhdenie Shtammov Leptospir Ot Spontannoi Aggliutinacii], 12, 65–67. Cabada, M. M., Aguilar, P. V., Rodas, J. D., Hidalgo, M., Mozo, K., Gonzalez-Diaz, E. S., Jimenez-Coello, M., Diaz, F. J., Dacso, M. M., Ortega-Pacheco, A., Arboleda, M., Walker, D. H., Weaver, S. C., & Melby, P. C. (2024). Establishment of a multisite umbrella cohort study protocol to describe the epidemiology and aetiologies of acute undifferentiated febrile illness in Latin America. BMJ Open, 14(7), e083560. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2023-083560 Confer, A. W., & Ayalew, S. (2013). The OmpA family of proteins: Roles in bacterial pathogenesis and immunity. Veterinary Microbiology, 163(3–4), 207–222. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2012.08.019 Faine, S., Adler, B., & Palit, A. (1974). Chemical, serological and biological properties of a serotype specific polysaccharide antigen in Leptospira. Australian Journal of Experimental Biology and Medical Science, 52(2), 311–319. https://doi.org/10.1038/icb.1974.29 Faine, S., Adler, B., & Ruta, G. (1974). A mechanism of immunity to leptospirosis. Australian Journal of Experimental Biology and Medical Science, 52(2), 301–310. https://doi.org/10.1038/icb.1974.28 Flórez-Martínez, D. H., Contreras-Pedraza, C. A., Escobar-Parra, S., & Rodríguez-Cortina, J. (2023). Key Drivers for Non-Centrifugal Sugar Cane Research, Technological Development, and Market Linkage: A Technological Roadmap Approach for Colombia. Sugar Tech, 25(2), 373–385. https://doi.org/10.1007/s12355-022-01200-9 García-Henao, J. P., Alzate-Piedrahita, J. A., Guevara-Betancurt, M. P., Forero-Gómez, J. E., Suárez-Brochero, Ó. F., & Medina-Morales, D. A. (2023). Acute Febrile Syndrome in an endemic region of Colombia: What is there beyond Dengue? [Síndrome Febril Agudo en una región endémica de Colombia: ¿Qué hay más allá del Dengue?]. Iatreia, 36(2), 147–157. Giannakos, M., Papamitsiou, Z., Markopoulos, P., Read, J., & Hourcade, J. P. (2020). Mapping child–computer interaction research through co-word analysis. International Journal of Child-Computer Interaction, 23–24. https://doi.org/10.1016/j.ijcci.2020.100165 Giraldo, J. M., & Beltrán, E. (2020). Carboxihemoglobina como marcador de la actividad antiinflamatoria en leptospirosis grave; respecto a un reporte de caso. Acta Colombiana de Cuidado Intensivo, 20(1), 61–65. https://doi.org/10.1016/j.acci.2019.12.003 Gutiérrez, A. H., Spero, D., Gay, C., Zimic, M., & De Groot, A. S. (2012). New vaccines needed for pathogens infecting animals and humans. Human Vaccines & Immunotherapeutics, 8(7), 971–978. https://doi.org/10.4161/hv.20202 Haake, D. A., & Zückert, W. R. (2017). Spirochetal Lipoproteins in Pathogenesis and Immunity (pp. 239–271). https://doi.org/10.1007/82_2017_78 Hanson, L. E., Tripathy, D. N., Evans, L. B., & Alexander, A. D. (1974). An Unusual Leptospira, Serotype illini (a New Serotype). International Journal of Systematic Bacteriology, 24(3), 355–357. https://doi.org/10.1099/00207713-24-3-355 Jaramillo Delgado, I. L., Aranzazu Taborda, D. A., & Duque-Arias, S. (2024). Descripción de alteraciones histopatológicas en riñones de Rattus norvegicus seropositivos a Leptospira spp. Revista de Investigaciones Veterinarias Del Perú, 35(4), e25319. https://doi.org/10.15381/rivep.v35i4.25319 King, A. M., Bartpho, T., Sermswan, R. W., Bulach, D. M., Eshghi, A., Picardeau, M., Adler, B., & Murray, G. L. (2013). Leptospiral Outer Membrane Protein LipL41 Is Not Essential for Acute Leptospirosis but Requires a Small Chaperone Protein, Lep, for Stable Expression. Infection and Immunity, 81(8), 2768–2776. https://doi.org/10.1128/IAI.00531-13 King, A. M., Pretre, G., Bartpho, T., Sermswan, R. W., Toma, C., Suzuki, T., Eshghi, A., Picardeau, M., Adler, B., & Murray, G. L. (2014). High-Temperature Protein G Is an Essential Virulence Factor of Leptospira interrogans. Infection and Immunity, 82(3), 1123–1131. https://doi.org/10.1128/IAI.01546-13 Kumar, P., Shiraz, Mohd., & Akif, Mohd. (2023). Multiepitope‐based vaccine design by exploring antigenic potential among leptospiral lipoproteins using comprehensive immunoinformatics and structure‐based approaches. Biotechnology and Applied Biochemistry, 70(2), 670–687. https://doi.org/10.1002/bab.2389 Lo, M., Cordwell, S. J., Bulach, D. M., & Adler, B. (2009). Comparative Transcriptional and Translational Analysis of Leptospiral Outer Membrane Protein Expression in Response to Temperature. PLoS Neglected Tropical Diseases, 3(12), e560. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000560 López Rivero, A. S., Rossi, Ma. A., Ceccarelli, E. A., & Catalano-Dupuy, D. L. (2019). A bacterial 2[4Fe 4S] ferredoxin as redox partner of the plastidic-type ferredoxin-NADP+ reductase from Leptospira interrogans. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects, 1863(4), 651–660. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2019.01.004 Mailloux, M., Mazzonelli, J., & Dorta De Mazzonelli, G. T. (1974). Thermoresistant antigen in leptospires. Possibility of a macroscopic diagnosis of leptospirosis with a single antigen. ZBL.BAKT.REIHE A, 229(2), 238–241. Mariano, I. H. de M., Silva, B. F., Machado, M. da S., Blanco, R. M., Romero, E. C., Andrade, S. A., Ho, P. L., Martins, E. A. L., & da Silva, J. B. (2023). Analysis of LruC lipoprotein and identification of peptides candidates for vaccine development and diagnosis of leptospirosis. PLOS ONE, 18(2), e0281344. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0281344 Mazzonelli, J., de Mazzonelli, G. D., & Mailloux, M. (1974). Possibilité de diagnostic sérologique macroscopique des leptospiroses à l’aide d’un antigène unique. Médecine et Maladies Infectieuses, 4(5), 253–254. https://doi.org/10.1016/S0399-077X(74)80135-6 Mazzonelli, J., de Mazzonelli, G. D., & Mailloux, M. (1974). Possibilité de diagnostic sérologique macroscopique des leptospiroses à l’aide d’un antigène unique. Médecine et Maladies Infectieuses, 4(5), 253–254. https://doi.org/10.1016/S0399-077X(74)80135-6 Morris, J. A., & Hussaini, S. N. (1974). Characterization of the antibodies detected by the microscopic agglutination test for bovine leptospirosis. Journal of Hygiene, 73(3), 425–432. https://doi.org/10.1017/S0022172400042789 Musso, D., & La Scola, B. (2013). Laboratory diagnosis of leptospirosis: A challenge. Journal of Microbiology, Immunology and Infection, 46(4), 245–252. https://doi.org/10.1016/j.jmii.2013.03.001 Packchanian, A., & Price, T. G. (1946). Coexistence of the antibodies of yellow fever and Weil’s disease in human serum. Texas Reports on Biology and Medicine, 4(3), 364–367. PALIT, A., HAMILTON, R. C., & GULASEKHARAM, J. (1974). Further Studies on Leptospiral Genus-specific Antigen: Its Ultrastructure and Immunochemistry. Journal of General Microbiology, 82(2), 223–236. https://doi.org/10.1099/00221287-82-2-223 Peláez Sánchez, R. G., Quintero, J. Á. L., Pereira, M. M., & Agudelo-Flórez, P. (2017). High-Resolution Melting Curve Analysis of the 16S Ribosomal Gene to Detect and Identify Pathogenic and Saprophytic Leptospira Species in Colombian Isolates. The American Society of Tropical Medicine and Hygiene, 96(5), 1031–1038. https://doi.org/10.4269/ajtmh.16-0312 Perez Garzón, M., Zarama-Eraso, M. A., Sánchez Herrera, P., & Tipasoca Pineda, J. (2024). Atypical clinical debut associated with Jarisch Herxheimer reaction in an asplenic patient with leptospirosis: case report and review. BMC Infectious Diseases, 24(1), 1344. https://doi.org/10.1186/s12879-024-09854-4 Puentes, M. M. M., Camargo, K. D. J., Roberto, Y. A. M., Guzman-Barragan, B. L., Tafur-Gomez, G. A., & Clavijo, N. F. S. (2024). Infection and re-infection of Leptospira spp. in stray dogs and cats from Bogota, Colombia. Veterinary World, 973–980. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.973-980 Quintero-Vélez, J. C., Rodas, J. D., Rojas, C. A., Ko, A. I., & Wunder, E. A. (2022). Leptospira Infection in Rural Areas of Urabá Region, Colombia: A Prospective Study. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 107(6), 1267–1277. https://doi.org/10.4269/ajtmh.21-1103 Restrepo-López, N., Silva-Ramos, C. R., Rodas, J. D., Arboleda, M., Fernández, D., Uribe-Restrepo, P., Agudelo-Flórez, P., Tobón-Castaño, A., Hidalgo, M., Melby, P. C., Aguilar, P. V., Cabada, M. M., Díaz, F. J., & __. (2025). Malaria, Dengue Fever, and Leptospirosis in the Urabá Antioqueño Region, Colombia: Etiological and Molecular Characterization among Patients with Acute Undifferentiated Febrile Illness. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 112(2), 403–413. https://doi.org/10.4269/ajtmh.24-0490 Sánchez, I., Bello, W., España, K., León, P., Ortiz, O., Osorio, R., & Treco, R. (2017). Identificación de Leptospira serovariedad Icterohaemorrhagiae en un paciente canino con enfermedad renal en el municipio de Florencia - Caquetá, Colombia: Descripción de un caso clínico. Revista Electronica de Veterinaria, 18(10). Sánchez-Lerma, L., Mattar, S., Contreras, V., Miranda, J., Tique, V., Rodríguez, V., Rodriguez, D., Lopez, S., & Rojas-Gulloso, A. (2025). Hantavirus and Leptospira are important causes of nonspecific acute febrile syndrome, Meta, Colombia. Travel Medicine and Infectious Disease, 64, 102800. https://doi.org/10.1016/j.tmaid.2025.102800 Vaghasia, V., Lata, K. S., Patel, S., & Das, J. (2025). Epitopes mapping for identification of potential cross-reactive peptide against leptospirosis. Journal of Biomolecular Structure and Dynamics, 43(1), 20–35. https://doi.org/10.1080/07391102.2023.2279285 Vatti, A., Monsalve, D. M., Pacheco, Y., Chang, C., Anaya, J.-M., & Gershwin, M. E. (2017). Original antigenic sin: A comprehensive review. Journal of Autoimmunity, 83, 12–21. https://doi.org/10.1016/j.jaut.2017.04.008 Wolff, D. G., Castiblanco-Valencia, M. M., Abe, C. M., Monaris, D., Morais, Z. M., Souza, G. O., Vasconcellos, S. A., Isaac, L., Abreu, P. A. E., & Barbosa, A. S. (2013). Interaction of Leptospira Elongation Factor Tu with Plasminogen and Complement Factor H: A Metabolic Leptospiral Protein with Moonlighting Activities. PLoS ONE, 8(11), e81818. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0081818 Woolf, D., Sanchez, C., Gonzalez-Astudillo, V., Navarro, M., Tapia, C. C., Franco, M., Bustamante, J. A., Astudillo, M., & Mukherjee, J. (2021). LEPTOSPIRA SPECIES STATUS OF CAPTIVE NONHUMAN PRIMATES AND FREE-RANGING RODENTS AT THE BARRANQUILLA ZOO, COLOMBIA, 2013. Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 51(4). https://doi.org/10.1638/2019-0192 Yanagawa, R., Shinagawa, M., & Takashima, I. (1974). Serological studies of leptospiras by immunodiffusion. ZBL.BAKT.REIHE A, 228(3), 369–377. Yanagawa, R., & Takashima, I. (1974). Conversion of serotype in Leptospira from hebdomadis to kremastos. Infection and Immunity, 10(6), 1439–1442. https://doi.org/10.1128/iai.10.6.1439-1442.1974 Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ 54 páginas application/pdf application/pdf Sede Central Colombia Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA

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