Vigilancia nacional de aislamientos clínicos de Enterococcus faecalis resistentes al linezolid portadores del gen optrA en Colombia, 2014-2019

Objetivo. Describir las características epidemiológicas, fenotípicas y genéticas de aislamientos clínicos portadores de optrA identificados en la vigilancia de resistencia antimicrobiana por el laboratorio del Instituto Nacional de Salud de Colombia. Métodos. Entre octubre de 2014 y febrero 2019,...

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Main Authors: Saavedra, Sandra Yamile, Bernal, Johan Fabian, Montilla Escudero, Efrain, Torres, German, Rodríguez, Mabel Karina, Hidalgo, Andrea Melissa, Ovalle, María Victoria, Rivera, Sandra, Perez Gutierrez, Enrique, Duarte, Carolina
Format: article
Language:Español
Published: Pan American Health Organization 2024
Subjects:
Online Access:https://iris.paho.org/handle/10665.2/52679
http://hdl.handle.net/20.500.12324/39670
https://doi.org/10.26633/RPSP.2020.104
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institution Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria
collection Repositorio AGROSAVIA
language Español
topic Investigación agropecuaria - A50
Streptococcus faecalis
Farmacología
Ganadería y especies menores
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Saavedra, Sandra Yamile
Bernal, Johan Fabian
Montilla Escudero, Efrain
Torres, German
Rodríguez, Mabel Karina
Hidalgo, Andrea Melissa
Ovalle, María Victoria
Rivera, Sandra
Perez Gutierrez, Enrique
Duarte, Carolina
Vigilancia nacional de aislamientos clínicos de Enterococcus faecalis resistentes al linezolid portadores del gen optrA en Colombia, 2014-2019
description Objetivo. Describir las características epidemiológicas, fenotípicas y genéticas de aislamientos clínicos portadores de optrA identificados en la vigilancia de resistencia antimicrobiana por el laboratorio del Instituto Nacional de Salud de Colombia. Métodos. Entre octubre de 2014 y febrero 2019, se recibieron 25 aislamientos de Enterococcus spp. resistentes al linezolid. La identificación y sensibilidad antimicrobiana se determinó con Vitek 2 y la concentración inhibitoria mínima (CIM) al linezolid se estableció con E-test. El gen optrA se detectó mediante PCR. La diversidad genética de aislamientos positivos para optrA se analizó con Diversilab®. Se seleccionaron seis aislamientos para llevar a cabo la secuenciación del genoma completo. Resultados. Se confirmó el gen optrA en 23/25 aislamientos de E. faecalis de siete departamentos de Colombia. Los aislamientos presentaron una CIM al linezolid entre 8 y >256μg/mL. La tipificación por Diversilab® indicó una amplia variabilidad genética. Todos los aislamientos analizados mediante secuenciación del genoma completo, presentaron genes de resistencia fexA, ermB, lsaA, tet(M), tet(L) y dfrG además de optrA y fueron negativos para otros mecanismos de resistencia al linezolid. Se identificaron tres secuencias tipos y tres variantes de optrA: ST16 (optrA-2), ST476 (optrA-5) y ST618 (optrA-6). El entorno genético de los aislamientos optrA-2 (ST16) presentó el segmento impB, fex, optrA, asociado a plásmido, mientras que en dos aislamientos (optrA-6 y optrA-5) se encontró el elemento cromosómico transferible Tn6674-like. Conclusión. Los aislamientos clínicos positivos para optrA presentan una alta diversidad genética, con diferentes clones y variantes de optrA relacionados con dos tipos de estructuras y diferentes elementos genéticos móviles.
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Entre octubre de 2014 y febrero 2019, se recibieron 25 aislamientos de Enterococcus spp. resistentes al linezolid. La identificación y sensibilidad antimicrobiana se determinó con Vitek 2 y la concentración inhibitoria mínima (CIM) al linezolid se estableció con E-test. El gen optrA se detectó mediante PCR. La diversidad genética de aislamientos positivos para optrA se analizó con Diversilab®. Se seleccionaron seis aislamientos para llevar a cabo la secuenciación del genoma completo. Resultados. Se confirmó el gen optrA en 23/25 aislamientos de E. faecalis de siete departamentos de Colombia. Los aislamientos presentaron una CIM al linezolid entre 8 y >256μg/mL. La tipificación por Diversilab® indicó una amplia variabilidad genética. Todos los aislamientos analizados mediante secuenciación del genoma completo, presentaron genes de resistencia fexA, ermB, lsaA, tet(M), tet(L) y dfrG además de optrA y fueron negativos para otros mecanismos de resistencia al linezolid. Se identificaron tres secuencias tipos y tres variantes de optrA: ST16 (optrA-2), ST476 (optrA-5) y ST618 (optrA-6). El entorno genético de los aislamientos optrA-2 (ST16) presentó el segmento impB, fex, optrA, asociado a plásmido, mientras que en dos aislamientos (optrA-6 y optrA-5) se encontró el elemento cromosómico transferible Tn6674-like. Conclusión. Los aislamientos clínicos positivos para optrA presentan una alta diversidad genética, con diferentes clones y variantes de optrA relacionados con dos tipos de estructuras y diferentes elementos genéticos móviles. Red PulseNet para América Latina y el Caribe (OPS/OMS). 2024-07-26T20:17:40Z 2024-07-26T20:17:40Z 2020 2020 article Artículo científico http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1 info:eu-repo/semantics/article https://purl.org/redcol/resource_type/ART http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 https://iris.paho.org/handle/10665.2/52679 1680 5348 http://hdl.handle.net/20.500.12324/39670 https://doi.org/10.26633/RPSP.2020.104 reponame:Biblioteca Digital Agropecuaria de Colombia instname:Corporación colombiana de investigación agropecuaria AGROSAVIA spa Revista Panamericana De Salud Publica 44 1 10 Long KS, Vester B. Resistance to linezolid caused by modifications at its binding site on the ribosome. Antimicrob Agents Chemother. 2012; 56 (2): 603-612. Doi: 10.1128/AAC.05702-11. Rincón S, Panesso D, Díaz L, Carvajal LP, Reyes J, Munita JM et al. Resistencia a antibióticos de última línea en cocos Gram positivos: la era posterior a la vancomicina. Biomedica. 2014; 34 Suppl (1):191- 208. Doi: 10.1590/S0120-41572014000500022. Hashemian SMR, Farhadi T, Ganjparvar M. Linezolid: a review of its properties, function, and use in critical care. Drug Des Devel Ther. 2018; 12:1759-1767. Doi: 10.2147/DDDT.S164515. eCollection 2018. Deshpande LM, Castanheira M, Flamm RK, Mendes RE. Evolving oxazolidinone resistance mechanisms in a worldwide collection of enterococcal clinical isolates: results from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. J Antimicrob Chemother. 2018; 73 (9); 2314-22. Doi: 10.1093/jac/dky188. Pfaller MA, Mendes RE, Streit JM, Hogan PA, Flamm RK. Five-year summary of in vitro activity and resistance mechanisms of linezolid against clinically important Gram-positive cocci in the United States from the LEADER Surveillance Program (2011 to 2015). Antimicrob Agent Chemother. 2017; 61 (7): e00609-17. Doi 10.1128/AAC.00609-17. Mendes RE, Deshpande L, Streit JM, Sader HS, Castanheira M, Hogan PA, Flamm RK. ZAAPS programme results for 2016: an activity and spectrum analysis of linezolid using clinical isolates from medical centres in 42 countries. J Antimicrob Chemother. 2018;73(1):1880-7. Doi: 10.1093/jac/dky099 Cui L, Wang Y, Lv Y, Wang S, Song Y, Li Y, Liu J et al. Nationwide surveillance of novel oxazolidinone resistance gene optrA in Enterococcus isolates in China from 2004 to 2014. Antimicrob Agent Chemother. 2016;60(12):7490-3. Doi:10.1128/AAC.01256-16. Bender JK, Fleige C, Lange D, Klare I, Werner G. Rapid emergence of highly variable and transferable oxazolidinone and phenicol resistance gene optrA in German Enterococcus spp. clinical isolates. Int J Antimicrob Agents. 2018;52(6):819–27. Doi: 10.1016/j. ijantimicag.2018.09.009 Long KS, Poehlsgaard J, Kehrenberg C, Schwarz S, Vester B. The Cfr rRNA methyltransferase confers resistance to phenicols, lincosamides, oxazolidinones, pleuromutilins, and streptogramin A antibiotics. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50(7):2500–5. Doi: 10.1128/AAC.00131-06. Antonelli A, D’Andrea MM, Brenciani A, Galeotti CL, Morroni G, Pollini S at al. Characterization of poxtA, a novel phenicoloxazolidinone- tetracycline resistance gene from an MRSA of clinical origin. J Antimicrobial Chemother. 2018;73(7):1763-9. Doi: 10.1093/ jac/dky088. Wang Y, Lv Y, Cai J, Stefan S, Langing C, Hu Z et al. A novel gene, optrA, that confers transferable resistance to oxazolidinones and phenicols and its presence in Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium of human and animal origin. J Antimicrob Chemother. 2015;70(8):2182–90. Doi: 10.1093/jac/dkv116 Sharkey LK, Edwards TA, O´Neill AJ. ABC-F Proteins Mediate Antibiotic Resistance through Ribosomal Protection. MBio. 2016;7(2):e01975-15. doi: 10.1128/mBio.01975-15. Fan R, Li D, Feßler AT, Wu C, Schwarz S, Wang Y. Distribution of optrA and cfr in florfenicol-resistant Staphylococcus sciuri of pig origin. Vet Microbiol. 2017;210:43-8. Doi: 10.1016/j.vetmic.2017.07.030 Cai J, Schwarz S, Chi D, Wang Z, Zhang R, Wang Y. Faecal carriage of optrA-positive enterococci in asymptomatic healthy humans in Hangzhou, China. Clin Microbiol Infect. 2019;25(5):630.e1-630.e6. Doi: 10.1016/j.cmi.2018.07.025. Huang J, Sun J, Wu Y, Chen L, Duan D, Wang L. Identification and pathogenicity of an XDR Streptococcus suis isolate that harbours the phenicol-oxazolidinone resistance genes optrA an cfr, and the bacitracin resistance locus bcrABDR. Int J Antimicrob Agents. 2019;54(1):43-8. Doi: 10.1016/j.ijantimicag.2019.04.003 Cavaco LM, Bernal JF, Zankari E, Léon M, Hendriksen RS, Perez- Gutierrez E et al. Detection of linezolid resistance due to the optrA gene in Enterococcus faecalis from poultry meat from the American continent (Colombia). J Antimicrob Chemother. 2017;72(3):678-3. Doi: 10.1093/jac/dkw490. Munk P, Knudsen BE, Lukjancenko O, Duarte ASR, Van Gompel L, Luiken REC, et al. Abundance and diversity of the faecal resistome in slaughter pigs and broilers in nine European countries. Nat Microbiol. 2018;3:898-908. Doi: 10.1038/s41564-018-0192-9. Elghaieb H, Tedim AP, Abbassi MS, Novais C, Duarte B et al. From farm to fork: identical clones and Tn6674-like elements linezolidresistant Enterococcus faecalis from food-producing animals and retail meat. J Antimicrob Chemother. 2020;75(1):30-5. Doi: 10.1093/ jac/dkz419. Freitas AR, Elghaieb H, León-Sampedro R, Abbassi MS, Novais C, Coque TM et al. Detection of optrA in the African continent (Tunisia) within a mosaic Enterococcus faecalis plasmid from urban wastewaters. J Antimicrob Chemother. 2017;72(12):3245-51. Doi: 10.1093/jac/dkx321. Zhao Q, Wang Y, Wang S, Wang Z, Du XD, Jiang H et al. Prevalence and Abundance of Florfenicol and Linezolid Resistance Genes in Soils Adjacent to Swine Feedlots. Sci Rep. 2016;6:32192. Doi: 10.1038/srep32192. Freitas AR, Tedim Ap, Novais C, Lanza VF, Peixe L. Comparative Genomics of Global optrA-carrying Enterococcus faecalis Uncovers a Common Chromosomal Hotspot for optrA Acquisition within a Diversity of Core and Accessory Genomes. Microb Genom. 2020;6(6):1–17. Doi:10.1099/mgen.0.000350 Vorobieva V, Roer L, Justesen US, Hansen F, Frimodt-Møller N, Hasman H, Hammerum AM. Detection of the OptrA gene in a clinical ST16 Enterococcus faecalis isolate in Denmark. J Glob Antimicrob Resist. 2017;10:12-3. Doi: 10.1016/j.jgar.2017.05.002. Tsilipounidaki K, Gerontopoulos A, Papagiannitsis C, Penitaki E. First Detection of an optrA-positive, Linezolid-Resistant ST16 Enterococcus faecalis From Human in Greece. New Microbes and New Infect. 2019.;29:100515. Doi: 10.1016/j.nmni.2019.01.010 Cámara J, Camoez M, Tubau F, Pujol M, Ayats J, Ardanuy C, et al. Detection of the Novel optrA Gene Among Linezolid-Resistant Enterococci in Barcelona, Spain. Microb Drug Resist. 2019;25(1):87- 93. Doi: 10.1089/mdr.2018.0028. Clinical and Laboratory Standard Institute (CLSI). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; 28th ed. CLSI supplement M100. Wayne: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018. Zankari E, Hasman H, Cosentino S, Vestergaard M, Rasmussen S, Lund O, et al. Identification of acquired antimicrobial resistance genes. J Antimicrob Chemother. 2012;67(11): 2640-4. Doi: 10.1093/jac/ dks261. Hasman H, Clausen PTLC, Kaya H, Hansen F, Knudsen JD, Wang M, et al. LRE-Finder, a Web tool for detection of the 23S rRNA mutations and the optrA, cfr, cfr(B) and poxtA genes encoding linezolid resistance in enterococci from whole-genome sequences. J Antimicrob Chemother. 2019;74(6):1473-6. Doi: 10.1093/jac/dkz092 Carattoli A, Zankari E, García-Fernández A, Voldby Larsen M, Lund O, Villa L, et al. In silico detection and typing of plasmids using PlasmidFinder and plasmid multilocus sequence typing. Antimicrob Agents Chemother. 2014; 58(7):3895-3903. Doi: 10.1128/ AAC.02412-14. Seemann T. Prokka: rapid prokaryotic genome annotation. Bioinformatics. 2014;30(14):2068-9. Doi: 10.1093/bioinformatics/btu153 Camacho C, Coulouris G, Avagyan V, Ma N, Papadopoulos J, Bealer K, et al. BLAST+: architecture and applications. BMC Bioinformatics. 2008;10:421. doi: 10.1186/1471-2105-10-421 Carver T, Berriman M, Tivey A, Patel C, Böhme U, Barrell BG, et al. Artemis and ACT: viewing, annotating and comparing sequences stored in a relational database. Bioinformatics. 2008;24(23):2672-6. Doi: 10.1093/bioinformatics/btn529. McHugh MP, Parcell BJ, Pettigrew KA, Toner G, Khatamzas E, Karcher AM et al. Emergence of optrA-mediated linezolid resistance in multiple lineages and plasmid of Enterococcus faecalis revealed by long read sequencing. bioRxiv. 2020. Doi: 10.1101/ 2020.02. 28.969568 Partridge SR, Kwong S, Firth N, Jensen S. Mobile Genetic Elements Associated with Antimicrobial Resistance. Clin Microbiol Rev. 2018;31(4): e00088-17. Doi: 10.1128/CMR.00088-17. Li D, Li X-Y, Schwarz S, Yang M, Zhang S-M, et al. Tn6674 is a novel enterococcal optrA-carrying multiresistance transposon of the Tn554 family. Antimicrob Agents Chemother. 2019;63(9):e00809-19. Doi: 10.1128/AAC.00809-19. Rios R, Reyes J, Carvajal P, Rincon S, Panesso D, Echeverry AM et al. Genomic Epidemiology of Vancomycin-Resistant Enterococcus Faecium (VREfm) in Latin America: Revisiting the Global VRE Population Structure. Sci Rep. 2020;10: 5636. Doi: 10.1038/ s41598-020-62371-7 Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ application/pdf application/pdf Colombia Pan American Health Organization Washington (Estados Unidos de América) Revista Panamericana De Salud Publica; Vol. 44 (2020): Revista Panamericana De Salud Publica;p. 1-10